Genetyka roślin

wprowadzenie

Hordeum rodzaj należący do plemienia
Ceae, Poaceae trawy rodziny i
Obejmuje ona dwa podgatunki: spontaneum i
agriocrithon. H. spontaneum to roślina jednoroczna
z krótkimi cyklami życia, a tylko siedem diploidalnych
parę chromosomów i samopylnych.
różnorodność genetyczna była H. spontaneum
Zidentyfikowano szereg markerów, w tym izoenzymu
polymorphi SMS [1,2] RFLP ma RKE Rs [3,4]
RAPD markers [5] markerów SSR, [6,7], [8,9] AFLPmarkers i markerów SNP [10], odpowiednio. H. spontaneum ma więcej odmian
niż uprawnych jęczmienia i wiele alleli
związane z mediami specjalnymi [11,12].
Oddzielne wzorce geograficzne różnorodności genetycznej
utrzymuje się w dzikim jęczmienia (H. spontaneum)
Pomimo migracji [13].

Świadomy wybór pożądanych genotypów
rolników na wczesnym etapie, wraz z naturalnym
wybór, zwiększenie różnorodności i stworzył
bogata pula genów, źródłem zmian znalezionych
Dziś, lokalne odmiany. Te lokalne odmiany jak
Powstaje materiał podstawowy dla nowoczesnego przedsiębiorstwa
hodowla, która rozpoczęła się około 150 lat temu. [14]
Bezprzewodowy woju Tia MA l t i ING
jęczmienia browarnego stał się głównym
źródłem surowców. sprzyja jęczmień
umiarkowany klimat i jedne z
Najlepszy browarnego ziarna, dlatego jest w
districtsborderingthe wybrzeże [1 5].
Tymczasem wzrost produkcji jęczmienia
istotnie, jak popyt na pasze dla zwierząt gospodarskich ma
zwiększona. Również jęczmień ziarno specjalnego przeznaczenia
, zamiast ogólnej kultury rynku, znalezienie go
Najpowszechniej stosowany jako substytut kukurydzy zwierzęcia
karmienia i produkcji słodu. W konsekwencji, z

Tymczasem produkcja jęczmienia wzrosła

istotnie, jak popyt na pasze dla zwierząt gospodarskich ma

uprawiane. Ponadto, jęczmień - ziarno specjalnego przeznaczenia

zamiast całkowitego zbioru rynku, znalezienie

największe wykorzystanie kukurydzy zamiast zwierzę

karmienia i produkcji słodu. W konsekwencji, od

w połowie XX wieku, jęczmień zajęty

Czwarta pozycja w areału kukurydzy na świecie,

Po dużych obszarów ziemi w akrów pszenicy, ryżu, oraz

kukurydza. (Zob. Tabela 1) [16].

Fischbeck [17,18] zauważyć, prawie 85

% Obecnego światowej produkcji jęczmienia służy

karmić zwierzęta, a większość pozostałej części

MUM L T i N I N I a d s t r y. P o N S E Q U e n t l Y, R l b e y y i

przekształcony ludzkiego systemu dostaw żywności,

pośrednio. W regionie UE, zasilanie wewnętrzne

k o n s sędzia C J n r e t Wa S 7% I N 0 2 0 0 2 [1: 9].

Ponadto konieczność dla jęczmienia browarnego jako głównego

materiały dla przemysłu piwowarskiego należy podjąć

Biorąc pod uwagę, podczas gdy całkowity świat piwa

Produkcja wzrastała. Europejczycy produkują

25% całkowitej światowej produkcji piwa, które jest

równa 320 milionów hektolitrów piwa rocznie

(Brewers of Europe). słynny niemiecki

Przemysł piwo powinno być określane

Tysiąc browary z 100 milionów

Zdolność produkcyjna HL, co

znaczenie jęczmienia browarnego w niemieckim zbóż

produkcja. Z tych powodów, w centrum

Powielanie nie tylko zwiększa wydajność jęczmienia

produkcji, ale także poprawa słodowania

jakości jęczmień.

dziki jęczmień wkład do uprawy

poprawa

Udomowienie i wyborów jest ponad

w ostrym zwężeniem podstawy genetycznej roślin

gatunki [20], w tym jęczmień [21]. W ostatnich latach,

pożywką dla jednolitości jest przyspieszany

leczenia i prowadzą do większej skłonności

Rośliny chorobami, szkodniki i abiotyczne starań [22].

T H E r e n e ^ c i b o t t l e n E c k s r i s N I G F T r om h e

Przejścia między dzikimi genotypów do początku

d ome t y I C t e d d e obr litr cm n d r om e f r l r

domator zasoby genowe do nowoczesnych odmian ma

pozostawił wielu potencjalnie użytecznych genów. do

ostatnie 19

th

wieku, cała kulturalna tam jęczmień

jak ras lokalnych. Niektóre ras lokalnych są zapisywane na

Obecnie, zwłaszcza w krajach rozwijających się,

wybierając i hodowla ma w dużej mierze

ras lokalnych zastąpione czystej linii roślin uprawnych.

I n n C o V e n t o w N L L p n t rb e e d n i g n e w

Opcje są wykonane z prawyborów urządzeń

pula elity plazmy zarodkowej. W ciągu ostatniej dekady,

Intensywna hodowla ma dalsze opcje żniwa

zwężone puli genowej, zwłaszcza w samopylnych kultur zbożowych [23]. Ze względu na ograniczoną genetyczny

zmienność wśród nowoczesnych upraw, efektywne wykorzystanie

zmienność genetyczna nieodpowiednie lub dostępne

dzikich krewnych nowoczesnych odmian tak

Wymagane dla długotrwałej poprawy zbóż

Warianty [20]. W Europie choroba jęczmienia

mączniak prawdziwy (Erysiphe graminis), co powoduje,

Wydajność strata nawet 50 procent [24] sił

hodowców do wykorzystywania dzikich gatunków.

Dziki przodek uprawnych jęczmienia, H.

spontaneum udział w wielu użytecznych genów

Eve s Cha r l r c t e r s e SPE C i L ly di e e e e e

odporności na mączniaka prawdziwego [25] i rdza liści

[26]. wiele cech badano agrotechniczne

w tym gatunku, takich jak wydajność i jego komponentów

[27,28,29] Kwiatowy strukturze [30], zawartość białka

[31] Masa kłosku [32] i długość podstawy klin

[33]. Zmiany w warunkach fizjologicznych, skontaktował

tolerancja sól [34] tolerancję na zimno [35]

tolerancja na suszę i N-głód [36] również

Studiował w H. spontaneum. Dlatego H.

spontaneum nie tylko bogatym źródłem nowy

Odporność na chorobę, ale również ważne gatunki

Oferujemy zmienności genetycznej dla ekonomicznie

ważne cechy.

Pokolenie współczesnych odmian elitarnych

Proces opiera się na wieloletnim wyborach

hodowców. Produktywność, jakość i jednolitość

Rośliny są oczywiste różnice tych odmian według

te dzikiego lub niedostosowane plazmy zarodkowej. W związku z tym,

po dzikich gatunków niepożądanych, które przenoszą geny

Były one wykorzystywane w negacji planów hodowlanych

Efekty następnie z tych genów - ciężar edycji

- będzie istotnym problemem. W przeszłości,

reprodukcja wprowadzania znaków w wielogenowe

zrównoważony populacji dzikich gatunków był

na ogół należy unikać. Aby dokonać ulepszenia w uprawach z nieograniczonych zasobów dziki

Różnorodność i nieprzystosowana zasoby genowe, konieczne jest

uczyć podejścia do ograniczenia lub przerwy

ciężar edycji.

Jęczmień - rodzaj chowu wsobnego, a tylko

selekcji roślin, co sprzyja jednolitości, ma

e b e c n o m m. o. n s t n e t e 1 sierpnia H 0 0 s. TH E w I L -d

Różnorodność progenitorowych i prymitywnych populacji miejscowych

jęczmień oferują bogate źródła zmienności genetycznej

zwiększania plonów [27,37]. Te baseny gen może

b E E x p l O I t e d n e n i g v k o n e n t o w N L Rb e e d n i g

procedura, ale z pomocą map genetycznych,

markery i ilościowe Cechy lokalizacje (QTL

Analiza) większą dokładność może być otrzymana w

wybór pożądanych genotypów.

Cząsteczkowej mapowania genomu jęczmienia

Mapowanie genetyczne w jęczmieniu

Nowe s P r o c e H e e e e c i s L L r t r i s c OMI

Analiza została z powodzeniem stosowany w

jęczmień Mapowanie chromosomowe [38]. jęczmień

(Hordeum vulgare L.) ma doskonały układ

do mapowania genomu, a na podstawie badań mapie

[39], ponieważ jego chromosomów - homologiczne

pszenicy i żyta kultury, odpowiednio, [40].

Podobnie, jęczmień - zestaw modelu gatunki

do badań genetycznych i fizjologicznych [41].

cytologii i genetyki jęczmień wykazały, że jest to

diploidalny (2n = 2x = 14), gatunki wsobne.

Siedem jęczmień chromosomy zostały zidentyfikowane i

oznaczony na podstawie ich wielkości i cech

[42]. Chromosomy 1 - 5 różnią się swoimi

wymiary o wielkości w metafazie mitozy, z

chromosomie 1 jest najdłuższy i chromosom 5 oznacza korotkim- chromosomy 6 oraz

7 są satelity z obecnością chromosomu 6

większą dostępność satelitarną i chromosomu 7

mniejszej wielkości satelitarnej [43]. Ponieważ chromosomy jęczmienne mają taką samą treść jak w DNA

Pozostali członkowie ceae i loci

jęczmień w dużej mierze współliniowe z miejsc

inne a R s R membe koncern I S E E C, Wi p f EW

Ruch dziedziczny obejmujące całe segmenty chromosomów, chromosom 1 - 7 z jęczmienia

(Hordeum vulgare L.), ponownie określa się jako

7th chromosom, 2H, 3H, 4, 1 H, 6 i 5

odpowiednio [44,45]. Istniejące genomu jęczmienia

w różnorodności „Betzes” stał się punktem odniesienia

gen w jęczmieniu, aby ustalić, że

Ruch i krótkie ramię / anulowanie długie ramię

To było standardem we wszystkich odmianach. Tymczasem, pszenica

dodatkowe linie chromosomów jęczmienia były dostępne

dla „Betzes”, aby inni pracownicy mają ceae

zachęta, by sprawdzić swoje badania na jęczmieniu [46].

Cytogenetyczne techniki, takie jak przemieszczenie

Analiza i sposób podstawowego trisomicznych

Odstęp roduc edytor ier ly i 1950 g e ^ ly

przyczyniły się do powstania cytogenetycznych

Karta l inkage [47]. E mor niż 60 ja sozyme

markery znajdują się w jęczmieniu [48,49,50] i

dobrze rozwinięta klasyczna mapa była genomowego

Argumenty „przeciw” redaktor RUC dla t ba RL ey naszej łąki i sozyme

markery morfologiczne [51].

markery molekularne

markerów RFLP

fragmentów restrykcyjnych rozwój

Długość (RFLP) dla dużej gęstości

mapowania genomu u człowieka [52] przewidziano nowy

techniką, która ma rozwiązać niektóre problemy

związany z izozymów i białka [53,54].

Od markerów RFLP były szeroko stosowane

zbudować edycji mapy dla wielu upraw

Odmiany, w tym z kukurydzy [55] Fig [56] i

pomidorów [57]. endonukleaza restrykcyjna

enzymy, które tną cząsteczek DNA w szczególności

Sekwencja nukleotydów, w zależności od szczegółów

enzym stosowany. Od genomowego DNA różni

Fragmenty sekwencji nukleotydowych różnych rozmiarach

To może być produkowane z różnych wprowadzeń roślinnych

gdy trawiony enzymami restrykcyjnymi i

rozdzielono metodą elektroforezy żelowej. rozdrobniony

DNA może zostać przeniesiony z żeli agarozowych

N ylo o N M I L T E R Y S S B O H U t e n r b o t t L N I g B i

Badania hybrydyzacji z komplementarnym DNA lub innego klonowanego

jedno - lub niskie kopia DNA zaznaczone elementy

radioaktywnie, fragmentów o różnych rozmiarach

obserwowana w odniesieniu do filtrów nylonowych zawierająca trawione

autoradiograficznym DNA. Polimorficzny DNA komplementarny

badania i inne sklonowane jedno - lub niskie kopia DNA

elementy są nazywane markerów RFLP.

Pierwsze zastosowanie RFLP genetycznej

Mapowanie w jęczmieniu w chromosomie, druga

Kleinhofs i wsp. [58], a następnie [59,60,61,62].

Technika ta jest potężnym narzędziem dla jęczmienia

W porównawczych badaniach mapowania między gatunkami

od ceae [63,64], w wyniku budowy

z mapy [65] Umowa i mapowanie genów

[66,67]

markery RAPD

PCR (reakcja łańcuchowa polimerazy) ma

Re V Ol u ti O N I Z e d m. O l e L R c U g e n e ^ c i s. TH E

PCR-rozwój opartych swobodnie działa

Test genetyczny nazywany RAPD (Random Amplified

Polimorficzny DNA) [68], AP-PCR [69] lub DAF

(Wzrost odcisków palców DNA [70] zawiera

powszechnie stosowane do budowy genetycznej

Karta [71,72,73,74,75] oraz zostały zmienione

prospe C- ^ S I C t Applied Molecular masses jonowe e cul R

markery do badania populacji i przyspieszenia

Reprodukcji [76,77]. W poszczególnych markerów RAPD

Zapewniamy bardzo potężne narzędzie do produkcji stosunkowo

ciasne mapy edycji w krótkim okresie czasu.

zwiększenie produkty testowe RAPD

Specyficzne fragmenty DNA, z losowych 10 podstawy

oligonukleotydów jako starterów. polimorfizmy

znaleźć wśród ludzi najwyraźniej dobiegła końca

z wielu zmian w tym sekwencji

Różnice w jednej lub obu podkładu mocującego

miejsce zdarzenia lub do wprowadzania / usuwania przegrupowania

w miejscach ognia lub silnego krajowego

sekwencji i określenie obecności lub

nieobecność konkretnego produktu amplifikowanego [78,79].

W ten sposób działa arbitralnie produktów PCR

zwykle dominującą markery i nie można odróżnić

homozygotycznych i heterozygotycznych stan.

W porównaniu z RFLPs, zaletą

przypadkowo uruchomione metody PCR, takich jak

RAPDs były wymogiem małych ilościach

kwasu (5-20ng) prędkości DNA do testowania

Polimorfizmy, wydajności wytwarzania dużych

liczba markerów i mapowania genomu

Potencjał automatyzacja technika [80]. (Ponieważ

Pierwsze dwa raporty dotyczące wykrywania i mapowania

Markery RAPD z jęczmienia [5,81] RAPD

Analiza jako prosty i łatwy sposób obsłużyć

Jest stosowany do oznaczania genów, takich jak geny

jęczmień oporowa punktowa [82,83] i jęczmień

Wirus żółtej karłowatości [84,85].

markery AFLP

Wzmacniany Polimorfizm długości fragmentów

(AFLP), zarówno odcisk palca PCR techniką na bazie

Po raz pierwszy opisano Zebeau Vos i [86].

Technologia AFLPTM z patentów posiadanych przez

Keygene N.V. (Keygene.com). jest ona oparta

na selektywnego zwiększania podzbioru

genomowe fragmenty restrykcyjne stosując PCR [87].

Genomowy DNA trawiono enzymami restrykcyjnymi

endonukleazy i ligowano do adapterów syntetycznych.

Zatem, sekwencja i adapter

sąsiedztwie ograniczenie przestrzeni konsoliduje podkładu

s i t e s f o r s Ub S E Q U e n t amperów L i K I C t o w N O N T h e

r e s t r i c n t o w f r m r. e n t a B i C, R. P M e L E C t i V e

N U CL e o t i d e e e t e n x d n i G I n t o t H E r e s t r i c n t o w

fragmenty dodano do końców 3 PCR

startery, tak, że tylko podzbiór ograniczeń

znaleziono fragmenty. ograniczyć tylko

Fragmenty, w których nukleotydy flankujące

Ograniczenia miejscu odpowiadającym selektywnych nukleotydów

wzmocnione. Podzbiór zamplifikowanych fragmentów

Następnie analizowano denaturujących poliakrylamid

Klej elektroforezy, w celu wytworzenia linii papilarnych.

Metoda ta pozwala na pewną współpracę wzrost

dużej liczby fragmentów restrykcyjnych.

liczbę fragmentów, które mogą być analizowane

w tym samym czasie, jednak zależy to od

Rozdzielczość systemu detekcji. poziom

Polimorfizm - niektóre gatunki. w porównaniu

z allozymes, RAPDs i RFLPs, AFLPs

mają wysoką wydajność w czasie i stać

Skuteczność, powtarzalność i rozdzielczości, oprócz tego, że

technika AFLP produkuje szczególnie dominującym

zamiast codominant markery [88].

Od pierwszego raportu na temat kartografii AFLP

jęczmień został wydany [89] kilka kart

Twórcy AFLP zostały zbudowane [39, 90, 91,

92]. Później stało się ważnym narzędziem w jęczmieniu

badania genetyczne, w tym badania

jęczmień pochodzenia [93, 94] Badania Różnorodność [95

96,97,98] mapowanie QTL [8 99100101102,

103 104 105] Wykrywanie oporności na chorobę

Geny 105 [106] Dokładne mapowanie i chorób

Geny oporności, takie jak MLO [107] i [108 MLA

Rph15 [109].

markerów STS

STS (Sequence Tagged Site) [110] Jest to

wyjątkowy, jedną kopię segmentu genomu

Sekwencja DNA, których wiadomo, umieszczenie

i który może być wzmocniony specyficzne PCR.

Z wielu starterów, około 20-25 nukleotydów

długości, która wynika z odcinka DNA z

znanej sekwencji, unikalne fragmenty DNA w przybliżeniu

90-300 bitów na sekundę może być zwiększona. kombinacja

Korzyści (marker - oparta na technice PCR, nie klon

Wymagane są naprawie lub dystrybucja) oraz

ich tryb co-dominującym dziedziczenia sprawia STS

stanowi ważny znacznik w systemie upraw

Rośliny [77111112]. Główną zaletą STS

markery są szybkość, z jaką mogą one być

analizowane jak tylko parę starterów PCR

zidentyfikowane.

Po pierwszym mapowaniem, Podawane, STS

markery w jęczmieniu [113] duża liczba RFLP

markery przekształcony stss dla odmiany

m i n g s E r r i n t n i g u r s p o s e [11 kwietnia] F O n s h y s t CL

Mapowanie [115], w celu mapowania pewnych genów

[116117118]. Później, mapa genetyczna dotykanie

Cały genom jęczmień [119] oraz nowych źródeł

rozwój produktów STS w jęczmieniu

dostępne wyniki oceny sekwencjonowania [120].

markery SSR

Proste powtórzenia sekwencji (SSR) [121] i

zwane Mikrosatelity, segmenty DNA

składający się z powtarzających się tandemowo krótkiego urządzenia 1;

6 par zasad długości i są codominantly

dziedziczona [122]. Takie motywy w obfitości i

wysokiego polimorfizmu w genomie eukariontów

[123]. Mikrosatelity można znaleźć wszędzie

T H E r e p a n o b o t h i n o p r t e i n - c. ° d I ND ND

regionów niekodujących. Zapisana sekwencja

region flankujący proste sekwencje powtórzone

To może być zaprojektowany jako parę starterów specyficznych dla

wykryć polimorfizm długości DNA przez

Łańcuchowa reakcja polimerazy [124 125]. wysoki poziom

polimorfizmu należy się spodziewać ze względu na

t h e p r o p o s E d m. e c h n i s m. r e s p o n s i b e l f o r

produkcja SSR różnorodność alleliczny odpowiedź

a L i P P r e [1 2 6]. TH E S S R R mama k e r s b e c n

I d e n t i fi E D B i s E Q U c i e n n g m i r o c e s t l l i t e. -

Klonów zawierający wstawkę izolowano z małą

genomowego DNA poprzez hybrydyzację biblioteki z

badaniach syntetycznych oligonukleotydów, to metoda

Jest to czasochłonne i stosunkowo drogie.

najtańszy sposób SSR ekranów

sekwencji w ogólnodostępnej bazie danych.

Najczęściej powtarzające się motywy znalezione

mono - di - lub tri - jednostek tetranukleotydów

(A) n, grupę (GA) n, grupę (TAT) n i (GATA) n, w fabrykach

[127]. Najbogatszy dimeryczny mikrosatelitarnych

z kilku znanych ssaków powtórzenie AC

[128] Chociaż w wielu rodzajach roślin są albo

Powtórzenie GA [129]. Więcej niż 75% jęczmienia

Gen składa się z sekwencji DNA powtarzane

[130]. Uważa się, że w genomie jęczmienia

obejmuje jeden powtórzyć GA 330 KB i każdy GT

powtórzyć co 620 KB [131], co zgadza

Wyniki, w której GA powtórzenia występują w jęczmieniu

wyższa częstotliwość niż GT powtarza Struss i

Plieske [132]. Podobne wyniki uzyskano z

Inne ważne uprawy, takie jak pszenica [133 134]

Rysunek [135] i kukurydzy [136]. wśród trinukleotydową

powtarzanie jęczmienia (CCG) n, grupę (AGG) n i (AGC) n

powtarzanie większości - częste motywów chwilę

(ACGT) n i (ACAT) n, w tetramerów mikrosatelity [137].

TH E d i s k o V e r r o f e r o c e s t l l i t e s Hs

znacząco zwiększała gęstość markera

l i n k e r mother P s s f o r ome matka lS, H N uma

Wideo: Nowoczesna hodowla roślin - Alisher Turaev

[138139] i myszy [140]. Montaż molekularna

Karta w wielu roślin i upraw były modelowe

ulepszone szybko dodawanie markerów SSR,

tak jak w Arabidopsis [141] [142] Figury pszenicy

[143] i kukurydzy [144]. wartość informacyjna

mikrosatelitarnych markerów do badań genetycznych i jak

p o w e Rf uL t o o O Lf Rb L E Y ^ r e e d n i c t y

potwierdzona w kilku badaniach [131132145, 146].

Wśród wielu ważnych systemach markery DNA

markery SSR wykazały najwyższą polimorfizm,

następnie RFLPs, RAPDs i AFLPs [97] .A

edytowanie map drugiej generacji wykorzystania jęczmienia

Tylko mikrosatelitarny-PCR opartej na markery były

Argumenty "przed" t edytor RUC t [147]. Być e ide s CD C E T E T L i L E S

uzyskane z genomowego klonów były również OCENA

wykorzystana dla rozwoju PCR opartej

Markerów SSR [137148149].

markery SNP

Najczęstszym typem polimorfizmu,

Wiadomo S Ingl e Nuc l EOT IDE polymorphi cm

(SNP), powinny być z jednej poważnej mutacji, które

zastąpienie jednej bazy do drugiej. inne typy

Polimorfizmy genetyczne wynikające z wprowadzania

lub usunięcie sekcji DNA, które zawierają

mikrosatelitarnych powtórzeniem, a całkowita ilość czynników genetycznych

Strata i permutacji. polimorfizmy mogą

Jest to spowodowane przez mutacje w zakresie od singli

Zmiany nukleotydów bazowe zmiany w kilku

Sto zasady. Mountain SNP udziale przedsiębiorstw

nie na podstawie testu żelu i był niedawno

ułatwić dostęp do całego genomu

seria i zamontowane w bazie. mapa genetyczna

ludzki genom zbudowany wykazujące

Położenie 2227 SNP [150]. naukowcy mają

zidentyfikowane w przybliżeniu 1400000 miejscach, w których

Różnice jeden zasad w DNA (SNP) dotyczą

osób. Miejsca polimorfizmy SNP oraz

znamienny tym wielu innych roślin, takich jak

Rysunek [151] buraka [152], kukurydzy [153] i soja

[1 5 4]. Mama n y SNP s H V e b e f e n n d o u wi TH

wyświetlanie wszystkich sekwencji genomu Arabidopis

thaliana (Arabidopsis Genome Initiative

2000) i Oryza sativa [155 156]. dla wielu

dużych genomów SNP można wykryć

oglądania przypisane im sekwencje. Dla jęczmienia SNP

Zostały one pomyślnie opracowane i stosowane w

badania genetyki [10157158159]. Ze względu na ich

B U n d n e n ie s L p p, t t i o n r t e wi t H I n

pokolenie, są one uważane za następująco

generowanie markerów genetycznych, które mogą być stosowane

w szereg znaczenie biologiczne genetycznej

farmakologiczne i zastosowań medycznych.

mapa o wysokiej rozdzielczości jęczmienia zdolności zostaną opublikowane

w niedalekiej przyszłości, zawierająca 1044 miejsc i

łącznie 611 mandatów RFLP, SSR 190 miejsc siedzących i 255

site SNP.

Genetyczna różnorodność dzikiej jęczmienia ma również

badali zastosowanie RFLPs [3] RAPDs [5] Proste

powtarzanie sekwencji [6] AFLPs [8]. pustkowie

jęczmień używany w badaniu AFLP badano

Wideo: 15x4 - 15 minut na temat zasobów genetycznych roślin

w odpowiedzi na wielu sił nieożywionych

tym suszę, zasolenie, N-głodu, zimnym

ozon i długość dnia.

QTL w jęczmieniu

Mapowanie cech agrotechnicznych

Od ponad dziesięciu lat, wraz z rozwojem

metody molekularne, analiza QTL użyto

wykryć żniwa i związane z cechami płodności.

najważniejsza cecha agronomic we wszystkich uprawach

znaczenie gospodarcze, a jęczmień jest upraw,

co jest bardzo skomplikowane. Wiele efektów QTL

Zbiór został odwzorowany na siedmiu chromosomach

w całym genomie. jak podsumowano

w Tabeli 2, z różną liczbą QTL uzysku

Zostały one znalezione w różnych populacjach i

warunki środowiskowe. Jednak wiele z

są one bardzo trudne do zatwierdzenia. Z sześcioma rzędami

c r o s s, St e s t o p M O r E x (M S), h y b e n e

rozbudowane w populacji mapowania.

W oparciu o dane z szesnastu fenotypowych

Miejsca 14 QTL uzysku zostały zmapowane do

siedem chromosomów w tej populacji kartografii

[160]. Spośród nich tylko pięciu procent 2H, 3H, 5, i 6

Potwierdzono, w tym samym przekroju Romagosa

i wsp. [161 162] Han et al. [163], odpowiednio.

Pozostałe dwie cechy agronomiczne datę i nagłówek

Wysokość rośliny łatwiej było być badane i

W e r e e VL U t e d s d d I S O N L i m. s o rt n t

informacje do zakończenia zbiorów.

Mapowanie jakości browarnego

poprawa jakości i produkcji słodu

Ważnym celem dla hodowców jęczmienia

ze względu na jego głównej użytku przemysłowego w warzeniu piwa.

Jednak jakość browarnego - złożony charakter

wiąże się z wielu funkcji, takich jak ekstrakt słodu

procent ziarna pełne białko rozpuszczalne białka

Stosunek rozpuszczalnego / białko całkowite, glukanu treść,

okrągłości jądrowej, aktywność amylazy, diastatyczna

Moc i słodu -glukanaza [164]. browarnego

Proces ten polega na oddziaływanie wielu

Geny ekspresji podczas kiełkowania i

rozwoju, w zależności od temperatury

wymagane podczas reakcji [165]. nie

Tylko wydajność i jego komponenty dotknięte

Gen ti c fc S tor środo ronment s, i t matka ki

jakość jęczmienia wpływa również ich

czynników. enzymów a-amylaza i L-amylazy

żelatynizowanej skrobi konwersji cukru i glukany

[166167]. Pięć QTL dla jakości słodu były

Wykryto wokół miejsc amylazy na 2 h, 4 i

6th [160], w którym jako pierwszy raport QTL

analiza jakości słodu. Han i wsp. [168]

(1995) odwzorowane 12 miejsc glukanu

Ziarna jęczmienia i działania to -glukanaza

glukanu degraduje ściany komórkowej w procesie słodowania,

odpowiednio. Podsumowując wyniki wieloletniej danych

i położenie, obszar na chromosomie, siódmy obok

centromer zidentyfikowano jako kompleks

Wideo: Roślina Genetyczny bank

Dziedzina QTL, ekstrakt słodowy sterowania amylazy

Działania, diastatyczna moc i -glukanaza, etc.

[169]. Wyższa zawartość białka, a stosunek rozpuszczalnego /

pełen wpływ na jakość białka w produktach i

wzrost kosztów produkcji. chociaż przechowywania

oraz białka strukturalne (GluA, GluB i Glu.c1)

były mapowane na 1 g [61] białko QTL

C o n t e n t n d r t o w e Śr mother r p p e d o N s v e n e

chromosomów [170171172173]. Ponadto,

QTL dla dużej liczby spoczynku nasion i

RMI Z e n t o w n to r e r e p o r t e d B i Ha n e ^ l.

[163,174] Thomas i wsp. [175] Romagosa i in.

[176] oraz Gao i wsp. [177] (zob. Tabela 3). Spośród nich,

prime location drzemka na piątym chromosomie było

testowano w różnych laboratoriach.

Mapowanie genów odporności na choroby

Wniosek jest w środku strat w zbiorach

10,5% jęczmienia spowodowanego chorobami, w oparciu

na 15 700 literatury i 3700 obszarach

Testy [178]. Jorgensen, [179] opublikowali listy

83 miejsc, odporność sprzyjanie ważne jęczmień

choroba. GRANER [180], aby zapewnić wartość

Przegląd odwzorowania cząsteczkowej i jakościowe

ilościową oporność na choroby genów. strumień

Odporność na studia państwowe i hodowlane w jęczmieniu

Byliśmy zestawione szczegółowo Kleinhofs i Han

[43] Chelkovsky i wsp. [181] i Weibulla i in.

[182. wzrost jęczmień, uszkodzone głównie przez grzybowe

oraz choroby wirusowe (zob. tabela 4). grzybicze

choroby obejmują mączniaka prawdziwego, rdzę spalić

choroby (rdza liści, podstawa rdzy i taśmy rdza) setpyatno i inne. Jęczmień jest atakowany przez kilka

Wirusy będące żółtej karłowatości jęczmienia

wirusy, wirus żółtej karłowatości zboże, jęczmień

Listwa wirus mozaiki, jęczmień żółtym paskiem

mozaika wirus i wirus karłowatości pszenicy. Podsumowanie QTL, która jest przedstawiana w jęczmieniu (zob.

Tabela 5), ​​757 pokrywają całą QTL jęczmień

Gen oporności nieożywionej napięcia agronomiczne

wyposażony biotyczne odporność na stres i cechy jakościowe

inni [169].

Zaawansowana analiza odwrotnego crossing-QTL

Eshed i Zamir [183] ​​sugeruje stosując

V r i t o w e n t o f H e B C k c r o s s I T H O G [01 sierpnia 4]

w połączeniu z informacji genetycznej mapy, do mapowania

QTL i zaznaczone rodzin z pożądanego obszaru chromosomowego. Wraz z rozwojem

molekularne markery i edytować mapy, zaawansowane

krzyżowanie wsteczne (AB) Strategia mapowanie QTL [23] Istnieje

być wykorzystane do oceny dawcy w introgresji

genetyczne tło obecnej elity

rodzicem. Stosując to podejście korzystne allele i

potencjalnie cenne QTL pochodzi z jak

dzikiego lub dostosowane źródeł plazmy zarodkowej i oznaczone

markery molekularne mogą być związane z

Wydajność potomstwo zwolniona.

równoległe, te allele QTL zostaną przekazane

Linie prawie izogeniczne (ml) przez znacznik

bound reprodukcja wyboru. Dlatego też, w przeciwieństwie do tego,

Konwencjonalne sposoby mapowania QTL, analiza ABQTL można przyspieszyć

Hodowla oparta marker bo końcowych produktów

Analiza się do zera, nośnik korzystne

alleli.

Od 1980 Tanksley i wsp. [185] zawiera

Przeprowadzone badania genetyczne do owoców wielkości / kształtu i

28 odwzorowane QTL ciekawe funkcje, wykorzystując siedem

dzikie gatunki pomidorów i wyposażony w siedem

projekty skrzyżowań [186]. W laboratorium Tanksli, Alpert

e ^ in. [187] r EPOR t edytor matka jor QTL, fw2.2,

kontroli wagi owoców, które zostały znalezione w naturze

odmiany pomidora z populacją 257 BC1

rośliny. W następnym roku, korzystne allel QTL

(Fw9.1) z dzikiego gatunku zidentyfikowane

chromosomu 9, który zwiększył wielkość owoców

prawie 14% [185]. Populacja ta była również BC1

wykorzystywane do konstruowania mapy genetycznej odpowiedniego montażu

lokalizacja dla cech ilościowych (QTL) analiza będzie

przeprowadzone w różnych krzyżówkę wsteczną [188]. wysoko

rozdzielczości odwzorowywania i izolowanie YAC

W obszarze poczyniono fw2.2

[189]. Bądź s ide s cd rol l ki s, którą z e thedeveloping owoców pomidora, fw2.2 miał również wtórny

E i E C t następujące a do f rui numbe t r i e t photosyntha

dystrybucja jako negatywny regulator wzrostu owoców

[190,191]. Jest to jeden z pierwszych cząsteczkowej

Dane położenie, które było pierwotnie

zidentyfikowane w pełni mapowanie QTL, punkt

analizy QTL. Ponadto fs8.1 głównym QTL

od dzikich gatunków, które wpływają na kształt owoców było

znamienny z tej samej populacji [192].

e i po E C t ozna może tR C edytor edytor wi p advanc

populację z krzyżówek wstecznych (BC4F3) zidentyfikowano

Engage kształt owoców wcześnie w rozwoju carpel

co najmniej 6 dni przed rozpoczęciem kwitnienia z szeregu zer

[193]. Jednocześnie, podział ZERO

jak ten obszar zainteresowania został odebrany. w innym

skrzyżowanie gatunków dzikich pomidorów Kultury

pomidor, wykryto setki QTL

różne lokalizacje dla 19 cech, agrotechnicznych

w tym dla smaku pomidorów [194 195 196 197].

Coraz prawie izogenicznych linii transferu

tylko donor żądanego introgresji pustyni

QTL allele opracowano [198199200] i

analizie [201, 202, 203] Ponieważ pierwszy raportu pomidora [185] Analiza ABQTL powodzeniem stosowane

wielu upraw odkryć i przekazać cenne QTL

od plazmy zarodkowej nieprzystosowana do elitarnej hodowli

Linia, na przykład w ryżu [204,205,206,207,208,209,

210 211] i kukurydzy [212] (Ho i wsp., 2002).

Ostatnio, dwie pierwsze badania AB QTL na pszenicy

i jęczmień emitowany [213] i [214]

odpowiednio

uwagi Wnioski

Przyszłe badania zmierzające do identyfikacji genów kandydujących dla QTL, coraz bardziej będzie

polegać na wkładzie technologii

mn t tworzą dużą przepustowość genotypowania

Mikromacierze, profilowanie metaboliczne, itp będą one

zapewnić lepsze zrozumienie genomowego marki

(Na przykład, polimorfizm pojedynczego nukleotydu, SNP haplotypów w obszarach) i ich zmian

molekularne i biochemiczne profilowanie

pl mrówka spowodowane przez suszę i inne ciekawe nagrody r

Wysiłki środowiska [215]. wykorzystanie

w pobliżu izogeniczne linii w QTL docelowych z

Informacje dostarczone przez łamanie badawczych edycji równowagę, poprawić naszą zdolność do

wybrać podstawę genetyczną produkcji roślinnej pod

suszy i dostarcza drogi klonowanych genów

Bazowy główne QTL. Chociaż klonowania QTL

Jest zastraszenia, zwłaszcza w zbożach,

Dostępność rekombinowanych linii z substytucją chromosomu, contiged genomowego i

informacje dotyczące sekwencji ułatwi

w przyszłości.

Nevo E. Brown, A.H.D. i Zohary, D. 1979.

Genetyczna różnorodność dzikiej protoplastę w jęczmieniu

Izrael. Experientia 35: 1027/29.

2. Liu F Sun, G. L., Salomon i B. von Bothmer,

R. 2002. Charakterystyka różnorodności genetycznej w rdzeniu

przystąpienia kolekcja dzikiego jęczmienia Hordeum

vulgare spontaneum. Hereditas 136: 67-73.

3. Saghai-Maroof, M.A., Soliman, K.M., Jorgensen,

R. A. i Allard, R. W. 1984. DNA rybosomalnego

spacerlength polimorfizmy w jęczmieniu: Mendelian

dziedziczenie, lokalizacja chromosomalnych i ludność

dynamiki. Proc. Nat. Acad. Sci. USA 81: 8014-8018.

4. Zhang Q. Maroof, M.A.S. i Kleinhofs, A.

1993. Analiza porównawcza różnorodność RFLPs i

izoenzymów w obrębie i między populacjami Hordeum

vulgare spontaneum. Genetics 134: 909-916.

5. Dawson, I.K., Chalmers, KJ, Waugh, R. i

Powell, W. 1993. wykrywania i analizy genetycznej

zróżnicowanie populacji spontaneum z Hordeum

Izrael za pomocą markerów RAPD. Mol. Ecol. 2: 151-159.

6. Saghai-Maroof, M.A., Biyashev, R. M., Yang,

G.P., Z H n g, P. n d a L L a Rj, R. W. 09 styczeń 09 kwietnia.

Wyjątkowo polimorficznego DNA w mikrosatelitarnych

Różnorodność gatunków, chromosomowe lokalizacje, jęczmień

i dynamika populacji. Proc. Nat. Acad. Sci. USA

91: 5466-5470.

7. Matus I.A. i Hayes, P.M. 200. Różnorodność genetyczna

w trzech grupach plazmy zarodkowej jęczmienia ocenianych przez

prostych powtórzeniach sekwencji. Genome 45: 1095-1106.

8. Pakniyat H. Powell, W., Baird, E. Handley,

L.L., Robinson D. Scrimgeour, C. M., Nevo, E.

Hackett, CA., Caligari, P.D.S. i Forster, o temperaturze wrzenia

1997. AFLP zmienność dzikiego jęczmienia (Hordeum

y p o n t a n e um C. Ko CH) wi T H r e f e r e n e t o s a L T

tolerancji i związane ecogeography. genom

40: 332-341.

9. Turpeinen T. Vanhala T. Nevo E. i NISSILÄ,

E. 2003 AFLP polimorfizm genetyczny w dzikim jęczmienia

(Hordeum spontaneum) populacje w Izraelu. teor

Appl. Genetics 106: 1333-1339.

10. Kanazin, V., Talbert H. Patrz, D. DeCamp, P.

Nevo E. Blake, T. 2002. Wykrywanie i test

polimorfizmów pojedynczych nukleotydów w jęczmieniu

(Hordeum vulgare L.). Plant Mol. Biol. 48: 529-537.

o r 11 f s t e r B. P. E L L i S, R. P., TH oma s, W.T. B. ,

Newton, A.C., tuberosa, R., Ten, D. El Enein,

R. A., Bahari, M.H. Ben Salem, M. 2000.

Opracowanie i zastosowanie markerów molekularnych

dla tolerancji stresu abiotycznego w jęczmieniu. J. Exp. Bot.

51: 19-27.

12. van Rijn-, CA. 2001. fizjologiczne i genetyczne

analiza charakterystyk wzrostu w Hordeum

spontaneum. Ph.D. Thesis.

13. Morrell, P.L., Lundy, K.E. i Clegg, M.T. 2003.

Odrębnych wzorców geograficzne różnorodności genetycznej są

utrzymywane dzikiego jęczmienia (Hordeum vulgare ssp

spontaneum) mimo migracji. Proc. Nat. Acad.

Sci. USA 100: 10812-10817.

14. von Bothmer R. Sato, K. i Kn pffer H. i vanHintum T. 2003. różnorodność jęczmienia - wprowadzenie.

W: różnorodności w jęczmienia (Hordeum vulgare). Eds. vanBothmer R. van-Hintum T. Kn pffer, H. i Sato,

K. Elsevier Science B.V. s. 1-8, Amsterdam,

Holandia.

15. Hunt ier H. 1951. Ba R L EY. W: C rop var i e t i e s;

Odmian zbóż, lnu, ziemniaków, fasoli i pola

groszek. Ed. Hunter, H. pp. 15. Farmer & Stock-hodowca

Publications Ltd. Londyn.

16. Światowa produkcja zbóż. 2003. FAO-Food i

Organizacja Rolnictwa Narodów Zjednoczonych.

https://faostat.fao.org/faostat/collections.

17. Fischbeck, G. 2002. Wkład do jęczmienia

rolnictwo: krótki przegląd. W: Jęczmień Science:

Re c e n t a n d v c e O d Mo L E c U l a r b I Ol O r t o g

Agronomia wydajności i jakości. Eds. Slafer, G.A.,

Molina-Cano, J. L., Savin, R., Araus, J. L. i

Romagosa, I.Food Produkty Press, odcisk

Haworth Press, Inc., pp. 1-14.

18. fi s chbe CK, G. 2003. Dive R S I f I C t jonów przez

hodowla. W: różnorodności w jęczmienia (Hordeum vulgare).

Eds. von Bothmer, R. van Hintum T. Kn pffer, H.

oraz Sato, K. Elsevier Science B.V., pp. 29-52.

Amsterdam, Holandia.

19. Dane USDA: 2003. Stany Zjednoczone Deparment od

Tanksley, S. D. i McCouch, S. 1997. banków nasion

oraz mapy cząsteczkowym samym potencjał genetyczny

w środowisku naturalnym. Science 227: 1063/66.

21. Powell, W. 1997. Molecular biology- w: szkocka

upraw instytut badawczy raport roczny 1996/97. Eds.

Smith, W. H. i Heilborn, T.D. pp.79-82. Dundee.

22. Plucknett, D. L. Smith, N.J.H., Williams, J.T. i

Anishetty, N.M. ochrony zasobów genowych 1983. Crop i kraje rozwijające się. Science 220: 163;

169.

23. Tanksley, S.D. Nelson, J. C. 1996. zaawansowane

a n k c r o s o Q t L N A L y s t S: m e t o d m H O rt H PL

jednoczesne odkrywanie i przekazywanie cenna

QTL z nieprzystosowana plazmy zarodkowej język elitarnej hodowli

linie. Teor. Appl. Genetics 92: 191-203.

24. Ellis R.P. 2002. dziki jęczmień jako źródło genów

dla poprawy upraw. W: Jęczmień Science: Najnowsze

Postępy biologii molekularnej z Rolniczy z

Wydajność i jakość. Eds. Slafer, G. A., Molina-Cano

J. L. Savin R. Araus, J. L. i Romagosa I. Food

Produkty Press, odcisk The Haworth Press,

Inc., pp. 65-83.

25. Gustafsson, M. i Claesson, L. 1988. Odporność

na mączniaka u dzikich gatunków jęczmienia.

Hereditas 108: 231-237.

26. Moseman, J. G., Nevo E. i El-Morsidy M.A.

1 9 9 0. Re oznacza grupę C t i o n s o f Ho rd um y s t a n o n e t o um

Zakażenie dwóch kultur Puccinia hordei z

Izrael i Stany Zjednoczone. Euphytica 49: 169-175.

27. Nevo E. 1992. A igin, evolut jon popul t jonów

genetyka i zasoby do hodowli dzikiego jęczmienia,

Hordeum spontaneum w Żyznego Półksiężyca. w:

Jęczmienia: Genetics, Biochemistry Molecular Biology

N d b I o t e C H N O l O g r. PL d. E w y w a r r, P.R. C A B

Międzynarodowa, pp. 19-44. Wallinford, Wielka Brytania.

28. Ivandic, V., Hackett, C. A., Zhang Z.J., Staub,

J. E., Nevo, E. Thomas, W.T.B. i Forster, o temperaturze wrzenia

2000. odpowiedzi fenotypowych dzikiego jęczmienia

eksperymentalnie nałożone stres wodny. J. Exp. Bot.

51: 2021-2029.

29. Ivandic, V., Hackett, C. A., Nevo E. Keith R.

Thomas, W.T.B. i Forster, o temperaturze wrzenia 2002. Analiza

prostych sekwencji powtórzeń (SSR) w dzikiego jęczmienia

z Żyznego Półksiężyca: skojarzenia z ekologią,

geografii i czas kwitnienia. Plant Mol. Biol.

48: 511-527.

30. Giles B.E. i Bengtsson, B.O. 1988. Zmienność

w pylników wielkości w dzikiego jęczmienia (Hordeum vulgare ssp.

spontaneum). Hereditas 108: 199-205.

31. Jaradat, A.A. 1991. zmienność białek ziarna wśród

populacjach dzikich jęczmienia (Hordeum spontaneum

C, Koch) Jordana. Teor. Appl. Genetics 83: 164;

168.

32. Volis S., Mendlinger, S. i Orłowski, N. 2000.

Va r I a b I l I T y i n s h e n o t y p i r a c t i t n i s k o r e n d

peripheralpopulations dzikiego jęczmienia Hordeum

spontaneum Koch. Hereditas 133: 235-247.

33. Volis, S. Mendlinger, S. Turuspekov Y. i

Esnazarov, U. 2002. fenotypowa i allozyme

zmienność w populacji śródziemnomorskich i pustynnych

O f wi Ld b a e r r l ho rd um y s t a n o n e um Ko Ch.

Rozwój 56: 1403/15.

34. Forster, B.P., Russell, J. R. Ellis, R. P., Handley,

L.L., Robinson D., Hackett, C. A., Nevo, E.

Waugh, R. Gordon, D. C. Keith R. i Powell,

W. 1997. Umiejscowienie genotypów i geny abiotycznych

tolerancja stresu w jęczmieniu: strategia za pomocą mapy,

Znaczniki i dzikich gatunków. Nowy Phytologist

137: 141-147.

35. Baum, M., Grando, S. Backes, G. Jahoor, A.

Sabbagh, A. i Ceccarelli, S. 2003. QTL dla

agrotechniczne cechy w otoczeniu śródziemnomorskiej

zidentyfikowane w rekombinowanych liniach wsobnych krzyża

'Arta' H spontaneum 41- 1. teoret. Appl. genetyka

107: 1215/25.

36. Robinson, D., Handley, L.L., Scrimgeour, C. M.,

Gordon, D.C., Forster, o temperaturze wrzenia Ellis, R.P. 2000.

Stosowanie trwałych izotopów naturalnych obfitość (delta N;

15 i delta C-13), aby zintegrować odpowiedzi na stres

dzikiego jęczmienia (Hordeum spontaneum C. Koch).

genotypy. J. Exp. Botany 51: 41-50.

37. Ceccarelli S. Grando S. i Van Leur, J.A.G.

1995. Jęczmień ras lokalnych w ofercie Żyzne Crescent

nowe opcje hodowlane dla środowisk stresu.

Różnorodność 11: 112-113

38. Tsuchiya, T. 1986. Mapowanie chromosomowe w jęczmieniu

za pomocą analizy trisomicznych. W: Nowe podejście

Crop Improvement. Eds. Sddiqui, K.A. i

Faruqui, A. M. PIDC Press, Karaczi.

Video: Genetyka i hodowla

39. Costa, J. M., Corey, A., Hayes, P.M., Jobet, C.

Kleinhofs A., Kopisch-Obusch A., Kramer, S.F.,

Dahleen, L. S., Agrama, H.A., Horsley, R. D.,

Steffenson, B. J., Schwarz, P.B., Mesfin, A. i

Franckowiak, J. D. 2003. Identyfikacja QTL

związany z Fusarium kłosów na odporność

Zhedar 2 jęczmień. Teor. Appl. Genetics 108: 95-104.

40. Hori, K. Kobayashi T. Shimizu, A., Sato, K.

Takeda K. i Kawasaki, S. 2003 Skuteczna

konstrukcyjnych o wysokiej gęstości i jego mapę sprzężeń

aplikacja do analizy QTL w jęczmieniu. Teor. Appl.

Genetics 107: 806-813.

41. Koornneef, M., Alonso, Blanco C i Peeters

A.J.M. 1997. Genetyczne podejścia w fizjologii roślin.

Nowy Phytologist 137: 1-8.

42. U B r NH A M, C. R. n dH G b e r g A. 09 styczeń 06 maj.

Cytogenetyczne notatki na węzłach chromosomalnych

jęczmień. Hereditas 42: 467-482.

Kl e inhof s, A. i Han, F. 2002. Mol e ślepej aR

mapowania genomu jęczmienia. W: Jęczmień Science:

Re c e n t a n d v c e O d Mo L E c U l a r b I Ol O r t o g

Agronomia wydajności i jakości. Eds. Slafer, G.A.,

Molina-Cano, J. L., Savin, R., Araus, J. L. i

Romagosa, I. spożywcze Press, odcisk

Haworth Press, Inc., pp. 31-63.

44. Singh, R. J. i Tsuchiya, T. 1982. Identyfikacja

i oznaczenie telocentric chromosomów w

jęczmień za pomocą Giemsa techniki N-pasmami.

Teor. Appl. Genetics 64: 13-24.

45. Linde-LAURSEN I. 1997 Zalecenia dla

Wyznaczenie chromosomów jęczmień i ich

ramionami. Jęczmień Genetics Newsletter 26: 1-3.

46. ​​Islam, A.K.M.R. Shepherd, K.W. i Sparrow,

D.H.B. 1981. Wyodrębnianie i charakterystyka

euplasmic pszenica jęczmień linii addycyjnych z chromosomu.

Hereditas 46: 161-174.

47. Tsuchiya, T. 1984. Problemy mapowania w podnośnik

jęczmień. Jęczmień Genetics Newsletter 14: 85-88.

48. Brown A.H.D., Nevo, E. Zohary D. i Dagan,

D. 1978. genetyczna różnica w naturalnych populacjach

dzikiego jęczmienia (Hordeum spontaneum). Genetica

49: 97-108.

49. Brown A.H.D., Lawrence, G. L., Jenkin, M.

Douglass J., Gregory E. 1989. Linka przeciągania

w hodowli krzyżówek wstecznych w jęczmieniu. Dziedziczność 80: 234;

239.

50. Nielsen, G. i Johansen H.B. 1986. Wniosek

identyfikacja odmian jęczmienia w oparciu o

genotypów 2 i 39 hordeina izoenzymu loci

47 odmiany wzorcowe. Euphytica 35: 815-833.

51. Sogaard B. von-Wettstein-Knowles, str. 1987

B a r l e r: g e n ik n d r o c h m o s OMe S. C a s l r b e RG

Badania Komunikacja 52: 123-196.

52. Botstein, D., White R. L., Skolnick M. i

Davies, R. W. 1980. Budowa genetyczna

Mapa wiązanie u człowieka za pomocą długości fragmentów restrykcyjnych

polimorfizmy. Am. J.Hum. Genet. 32: 314-331.

53. Siddiqui, K.A. 1972. Zawartość białka i jakości

pszenicy chromosom zastępuje linie. Hereditas

71: 157-160

54. Siddiqui, K.A., Ingversen J., Koie B. 1972.

Inhe I t anc e PROT E w pa t t ERNS w Synthe tR Ic

kwasu l loploid Tr i t cum monococ cum (AA) i

Aegilops ventricosa (DDMvMv). Hereditas 72: 205;

214

55. Helentjaris T. Slocum, M., Wright, M. Schaefer

A. i Nienhuis J. 1986. Konstrukcja genetyczna

mapy sprzężeń w kukurydzy i pomidora przy użyciu ograniczeń

polimorfizm długości fragmentu. Teor. Appl.

Genetics 72: 761-769.

56. McCouch, S.R., Kochert, G. Yu Z.H. Wang, Z.Y.

i Khush, G. S. 1988. Molecular mapowania ryżu

chromosomów. Teor. Appl. Genetics 76: 815-829.

57. Tanksley, S.D., Ganal masa cząsteczkowa, książę J. P., de

Vicente M.C., Bonierbale M.C., Broun P. Fulton

T. M., J. J. Giovannoni, Grandillo S. Martin G.B.,

Messeguer R. Miller, J. C. Miller L. Paterson

A. H., Pineda O., R der M. S., Skrzydło R. A., Wu W.

i Young N.D. 1992. wysokiej gęstości cząsteczkowej

linkage map pomidora i ziemniaka genomów.

Genetics 132: 1141-60.